Análisis espacial y ambiental de lecherías infectadas con Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis en Antioquia (Colombia)
DOI:
https://doi.org/10.30972/vet.3215627Palabras clave:
Cubierta vegetal, enfermedad de Johne, geoestadística, lluvia, medio ambiente, temperatura superficialResumen
El presente estudio tuvo como objetivo describir la distribución espacial de Mycobacterium avium subsp paratuberculosis (MAP) en hatos lecheros, y detallar variables ambientales tomadas como referencia de los antecedentes físicos del área de estudio, específicamente aquellas relacionadas con los hatos positivos por MAP-qPCR, ubicados en seis municipios de la región norte de la Provincia de Antioquia (Colombia), de acuerdo con el muestreo ambiental y análisis por qPCR. Los hatos del estudio (n = 386) se ubicaron en 63 distritos diferentes de seis municipios. Los hatos participantes fueron visitados una vez entre junio y octubre (2016) para recolectar una muestra ambiental, y la identificación de MAP se logró utilizando un método de PCR cuantitativa dúplex en tiempo real. Las tendencias de lluvia, la temperatura de la superficie diurna y nocturna, y el índice de cobertura vegetal se tomaron como referencias ambientales del entorno físico del área de estudio. Además, se construyeron mapas de distribución de hatos positivos y negativos a MAP-qPCR, así como mapas de variaciones de temperatura y cobertura vegetal. Como resultado, hubo un aumento en los hatos positivos para MAP en el noroeste, sur y sudeste del área de estudio. Se encontró un régimen general de alta precipitación y las temperaturas superficiales diurnas y nocturnas mostraron variaciones importantes durante los meses de muestreo. No se encontró evidencia de manejo de la cubierta vegetal, tanto en pastizales como en áreas con vegetación nativa, excepto en un área de conservación. En conclusión, se reportan las condiciones Recibido: mmmm_AAAA / Aceptado: mmmm_AAAA 11
ambientales generales, donde es más probable que ocurra la detección de hatos positivos
para MAP, considerando enfoques que utilizan el mismo método de recolección (o uno muy
aproximado), el manejo de muestras y el método de detección molecular.
Descargas
Citas
Bailey TC, Gatrell AC. 1995. Interactive spatial data analysis, Interactive spatial data analysis.
Collins MT, Gardner IA, Garry FB, Roussel AJ, Wells SJ. 2006. Consensus recommendations on diagnostic testing for the detection of paratuberculosis in cattle in the United States. J Am Vet Med Assoc 229(12): 1912-1919.
Donat K, Kube J, Dressel J, Einax E, Pfeffer M, Failing K. 2015. Detection of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in environmental samples by faecal culture and real-time PCR in relation to apparent within-herd prevalence as determined by individual faecal culture. Epidemiol Infect 143(5): 975-985.
Elliott GN, Hough RL, Avery LM, Maltin CA, Campbell CD. 2015. Environmental risk factors in the incidence of Johnes disease’. Crit Rev Microbiol 41(4): 488-507.
Fedegan. 2015. Registro de vacunación, primer ciclo. Colombia
(official confidential material).
Freitas RM, Arai E, Adami M, Ferreira AS, Sato FY, Shimabukuro YE, et al. (2011). Virtual laboratory of remote sensing time series: visualization of MODIS EVI2 data set over South America. JCIS 2(1): 57-68.
Gao BC. 1996. NDWI - A normalized difference water index for remote sensing of vegetation liquid water from space. Remote Sens Environ 58: 257-266.
IDEAM. 2012. Mapa de clasificación climática de Caldas-Lang, República de Colombia, año 2012. Bogotá, DC., Instituto de Hidrología, Meteorología y Estudios Ambientales (IDEAM): Clasificación climática de Lang, 2012/Colombia.
Katayama N, Suzuki T, Shibata M, Ootake M, Kamata S, Yokomizo Y. 2004. Influence of ultraviolet-B (UV-B) on viability of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis. Grass Forage Sci 50: 336-340.
Kruze J, Monti G, Schulze F, Mella A, Leiva S. 2013. Herd-level prevalence of MAP infection in dairy herds of southern Chile determined by culture of environmental fecal samples and bulk-tank milk qPCR. Prev Vet Med 111(3-4): 319-324.
Kuenstner JT, Naser S, Chamberlin W, Borody T, Graham
DY, McNees A et al. 2017. The Consensus from the Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis (MAP) Conference 2017. Front Public Health 5: 208.
Larsen AB, Merkal RS, Vardaman TH. 1956. Survival time of Mycobacterium paratuberculosis. Am J Vet Res 17(64): 549-551.
Law DCG, Serre ML, Christakos G, Leone PA, Miller WC. 2004. Spatial analysis and mapping of sexually transmitted diseases to optimise intervention and prevention strategies. Sex Transm Infect 80(4): 294-299.
Lovell R, Levi M, Francis J. 1944. Studies on the survival of Johne’s bacilli. J Comp Pathol 54: 120-129.
Manning EJB. 2001. Mycobacterium avium subspecies
paratuberculosis. J Zoo Wildlife Med 32(3): 293-304.
Pillars RB, Grooms DL, Kaneene JB. 2009. Longitudinal study of the distribution of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis in the environment of dairy herds in the Michigan Johne’s disease control demonstration herd project. Can Vet J 50(10): 1039-1046.
Raizman EA, Wells S, Godden SM, Bey RF, Oakes MJ, Bentley DC, Olsen KE. 2004. The distribution of Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis in the environment surrounding Minnesota dairy farms. J Dairy Sci 87(9): 2959-2966.
Rowe MT, Grant IR. 2006. Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis and its potential survival tactics. Lett Appl Microbiol 42(4): 305-311.
Salgado M, Collins MT, Salazar F, Kruze J, Bölske G, Söderlund R, et al. 2011. Fate of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis after application of contaminated dairy cattle manure to agricultural soils. Appl Environ Microbiol 77(6): 2122-2129.
Schroen C, Kluver PWM, Butler KL, Condron RAH. 2000. Survival of Mycobacterium paratuberculosis in the environment. Meat and Livestock Australia Ltd, North Sydney.
Sweeney RW. 1996. Transmission of paratuberculosis. Vet Clin North Am Food Anim Pract 12: 305-312.
USDA (United States Department of Agriculture). 2010. Uniform Program Standards for the Voluntary Bovine Johne´s Disease Control Program. Washington D.C. United States, Department of Agriculture-USDA, Animal and Plant Health Inspection Service-APHIS.
Whitman WB. 2009. Modern Soil Microbiology, second ed. Agric Systems 100(1-3):89-89.
Whittington RJ, Marshall DJ, Nicholls PJ, Marsh IB, Reddacliff LA. 2004. Survival and dormancy of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis in the environment. Appl Environ Microbiol 70(5):2989–3004.
Whittington RJ, Marsh IB, Reddacliff L. 2005. Survival
of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis in dam water and sediment. Appl Environ Microbiol 71(9): 5304-5308.
Wolf R, Barkema HW, De Buck J, Orsel K. 2015. Sampling location, herd size, and season influence Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis environmental culture results. J Dairy Sci 98(1): 275-287.
Yengoh GT, Dent D, Olsson L, Tengberg AE, Tucker CJ. 2015. Use of the normalized difference vegetation index (ndvi) to assess land degradation at multiple scales: Current status, future trends, and practical considerations, Springer Ed.
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Política de acceso abierto
Esta revista proporciona un acceso abierto inmediato a su contenido, basado en el principio de que ofrecer al público un acceso libre a las investigaciones ayuda a un mayor intercambio global de conocimiento. La publicación por parte de terceros será autorizada por Revista Veterinaria toda vez que se la reconozca debidamente y en forma explícita como lugar de publicación del original.
Esta obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento-NoComercial 4.0 Internacional (CC BY-NC 4.0)