Identificación de cepas bacterianas cultivables presentes en peces (caballas) utilizando un fragmento del gen 16S ARNr

Autores/as

  • I. Pulache Universidad Nacional de Tumbes. Facultad de Ingeniería Pesquera y Ciencias del Mar.
  • A. Ordinola Universidad Nacional de Tumbes. Facultad de Ingeniería Pesquera y Ciencias del Mar.
  • E. Vieyra Universidad Nacional de Tumbes. Facultad de Ingeniería Pesquera y Ciencias del Mar.
  • O. Mendoza Universidad Nacional de Tumbes. Facultad de Ingeniería Pesquera y Ciencias del Mar.

DOI:

https://doi.org/10.30972/vet.3215638

Palabras clave:

Scomber japonicus, pescado salado, genómica, bacterias, gen 16S ArNr

Resumen

El salazonado de pescado es una forma antigua y económica de preservación que se usa aún en países en vías de desarrollo como el Perú. En la región Tumbes, es común la comercialización de caballa (Scomber japonicus peruanus) salada artesanalmente, por lo cual su inocuidad microbiológica no está garantizada. La presente investigación tuvo como objetivo identificar, mediante el secuenciamiento de un fragmento del gen 16S ARNr, las bacterias cultivables presente en la caballa salada comercializada en Tumbes. A partir de tejido del músculo de la caballa, se aislaron cepas bacterianas en medio TSA suplementado con 15% de NaCl, de las que luego se obtuvieron fragmentos del gen 16S ARNr, que fueron secuenciados para luego identificar la especie a la que pertenecieron mediante una búsqueda en Genbank. Adicionalmente se analizaron el contenido de humedad y de NaCl del músculo de la caballa salada. Como resultado se identificaron cepas típicas de productos salados como: Staphylococcus sp, Halomonas sp, Staphylococcus equorum, Salinivibrio sp, Staphylococcus nepalensis y Salinivibrio sp. Sin embargo, en el 70% de las caballas analizadas se tuvieron niveles de humedad inadecuados, así como bajos niveles de NaCl, lo cual indicó un salado inadecuado y en consecuencia un producto con pobre conservación.

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Citas

Balbuena ED. 2014. Manual básico sobre procesamiento e inocuidad de productos de la acuicultura. Minist. Agric. Ganad. Paraguay. On line: http://www.racua.net/upload/medManual_ procesamiento_PY.pdf.

Condori Ch. 2014. Deterioro y Conservación de Alimentos. Tesis para optar por el título de Ingeniero de Industrias Alimentarias. Univ. Nac. San Agustín, Fac. de Ing. de Procesos, Escuela Prof. de Ing. de Industrias Alimentarias, p.143.

Delacruz S y Roncal J. 2014. Conservación de alimentos mínimamente procesados. Tesis p/optar título Ing. Químico, Univ. Nac. Trujillo, Fac. Ing. Quím., Perú. 119 p.

Dulanto JR. 2013. Identificación rápida de especies del género Vibrio asociados con el cultivo de “langostino blanco”. Tesis Biología, Univ.Nac.Mayor San Marcos, 109 p.

Escobar KE y Hernández C. 2012. Análisis de bacterias patógenas en Sardina Salada-Seca. Tesis p/Licenciat. Biología, Univ.El Salvador, Escuela Biología, 124 p.

Guzman K. 2017. Calidad en la logística de alimentos perecibles. Titulación por examen profesional. Univ. Nac. Agraria Molina, Facult. Industr. Aliment., 52 p.

Grau C, Elguezabal L, Vallenilla O., Zerpal A. 2003. Evaluación de la flora microbiana halófila contamínate del pescado seco-salado. Instit. Univ. Tecnol. Cumaná, Venezuela. Rev Cient FCV-LUZ 13: 319-325.

Guan L, Cho KH, Lee JH. 2011. Analysis of the cultivable bacterial community in Jeotgal. Food Microbiology 28: 101-103.

INEI (Instituto Nacional de Estadística e Informática). 2014. Compendio Estadístico Perú 2014. Lima, Perú. On line: https://www.inei.gob.pe/media.

ITP (Instituto Tecnológico Pesquero del Perú). 2001. Guía para la instalación y operación de establecimientos dedicados al salado del pescado. Perú.

Jonghoon L, Sojeong H, Dowon J. 2018. Genomic insights into Staphylococcus equorum KS1039 as a potential starter culture for the fermentation of high-salt foods. BMC Genomics 19: 136.

León E. 2011. Muestreo estacional del contenido graso en músculos de “caballa” Scomber japonicus. Tesis para obtener grado de Biología, Univ. Nac. Callao, 98 p.

López L, Dávila L. 2005. Salado de merluza por pila seca, húmeda y por deshidratación osmótica a vacío (Merluccius gayi peruanus). Industrial data 8: 2.

López C. 2017. Análisis filogenético y genómico del género Salinivibrio. Tesis Doctoral, Universidad de Sevilla. 338 p.

López HC, Haba RR, Sánchez PC, Ventosa A. 2018. Salinivibrio Kushneri sp, a moderately halophilic bacterium isolated from salterns. Systematic and Applied Microbiology 41: 159-66.

OMS (Organización Mundial de la Salud). 2018. Codex alimentarius. Normas internacionales de los alimentos. On line:http://www.fao.org.pdf.

Pérez LM. 2005. Variabilidad genética de cepas nativas de Azospirillum brasilense mediante análisis tipo PCRRFLP del DNA 16S ribosomal. Tesis para optar al grado de Maestro en Biotecnología Genómica. Inst.Politéc.Nac., Reynosa, México, 107 p.

Romero JJ, Negrete RM. 2011.Presencia de bacterias gram positivas en músculo de pescado con importancia comercial en la zona del Caribe mexicano. Revista Mexicana de Biodiversidad 82: 599-606.

Rodicio M, Mendoza M. 2004. Identification of bacteria through 16S rRNA sequencing: principles, methods and applications in clinical microbiology. Enferm Infec y Microbiol Clínica 22: 238-245.

Spergser J et al. 2003. Staphylococcus nepalensis sp Nov, isolated from goats of the Himalaya region. Internat J Systemat & Evolut Microbiol 53: 2007-2011.

Zhang H et al.: 2015. Microbiological changes and biodiversity of cultivable indigenous bacteria in Sanbao Larger Yellow Croaker (Pseudosciaena crocea). J of Food Sci 80: 4 (M776-M781).

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Publicado

2021-11-05

Cómo citar

Pulache, I., Ordinola, A., Vieyra, E., & Mendoza, O. (2021). Identificación de cepas bacterianas cultivables presentes en peces (caballas) utilizando un fragmento del gen 16S ARNr. Revista Veterinaria, 32(1), 68–72. https://doi.org/10.30972/vet.3215638

Número

Sección

Trabajos de Investigación