Potenciales causas de pérdidas reproductivas en llamas (Lama glama) de Jujuy, Argentina

R. E. Marin; G. Moré; B. Brihuega; G. Cantón; H. E. Lamas

doi:10.30972/vet.3315883

Autores/as

R. E. Marin Universidad Nacional de Jujuy
G. Moré Cons. Nac. Investig. (CONICET). Laborat. Inmun. Facult. Cs. Vet. UNLP (La Plata)
B. Brihuega Laborat. Leptospirosis, Instit. Patobiología, Castelar, Buenos Aires
G. Cantón Sanidad Anim. Instit. Nac. Tecn. Agrop. INTA Balcarce
H. E. Lamas Est. Exp. Abra Pampa, Inst. Tec. Agr.(INTA, Jujuy).

DOI:

https://doi.org/10.30972/vet.3315883

Palabras clave:

llamas, aborto, mortalidad neonatal, serología, plantas tóxicas

Resumen

La cría de llamas es una importante actividad de impacto socioeconómico en la región Puna de la Provincia de Jujuy, sin embargo, la misma tiene una baja tasa de procreo. Con el objetivo de estudiar potenciales causas de pérdidas reproductivas y perinatales, se controló una tropa nativa de llamas durante toda la etapa gestacional y se establecieron los índices de preñez, abortos, natimortos, teratogenia y muerte perinatal. Además, se realizaron estudios serológicos de brucelosis, leptospirosis, diarrea viral bovina, herpes virus bovino, neosporosis, sarcocystosis y toxoplasmosis en las hembras que presentaron pérdidas de gestación. El 82,8% (24/29) de las pérdidas reproductivas no pudieron asociarse a la infección con los agentes virales y bacterianos investigados. Los niveles de anticuerpos contra N. caninum, T. gondii y diferentes serovares de Leptospira sp podrían sugerir infecciones crónicas con baja relación con las pérdidas reproductivas detectadas. Astragalus garbancillo fue identificado entre la vegetación de pastoreo, y su consumo podría estar asociado a la presentación de crías con deformaciones y posiblemente abortos y mortalidad de crías débiles, siendo que los animales con mayor exposición a su consumo, tuvieron más de 4 veces mayor riesgo de padecer pérdidas peri-post-natales que los menos expuestos. Se requieren mayores estudios para establecer la asociación de estas potenciales causas con las pérdidas reproductivas, principalmente abortos y teratogenia en llamas.

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Citas

Anónimo. 2010. Plan estratégico productivo (Plan Jujuy 2011-2020), Sector 4: ovino y camélido, Ministerio de Producción de Jujuy, Edición: G. Tijman, https: // drive. google.com/file/d/0By4c_oeuLMchTnNmSWd2cHdvOFk/view. p.243-259.

Acosta M, Ludueña H, Barreto D, Moro M. 1972. Brucelosis en alpacas. Revista Investigaciones Pecuarias IV ITA 1: 1, 37-49.

Barbieri ES et al. 2014. Relevamiento serológico de anticuerpos contra enfermedades virales de interés sanitario en llamas (Lama glama) de la Provincia de Jujuy, Argentina. Revista Argentina de Microbiología 46: 1, 53-57.

Belknap EB, Collins JK , Scott LR, Conrad KP. 2000. Bovine viral diarrhea virus in New World camelids. J Vet Diagn Invest 12: 568-570.

Brihuega B, Leoni L, Martinez VM. 1996. Leptospirosis en llamas (Lama glama): Estudio serológico. Rev Arg Prod Anim 16: 4, 393-396.

Celedón MO, Osorio J, Pizarro J. 2006. Aislamiento e identificación de pestivirus obtenidos de alpacas (Lama pacos) y llamas (Lama glama) de la Región Metropolitana, Chile. Arch Med Vet 38: 3, 247-252.

Chávez VA et al. 2004. First report of Neospora aninum infection in adult alpacas (Vicugnapacos) and llamas (Lama glama). JParasitol 90: 4, 864-866.

Chenchen W et al. 2014. Pathogenesis and preventive treatment for animal disease due to locoweed poisoning. Rev Envir Toxicol & Pharm 37: 336-347.

Diab S et al. 2013. Case report: abortion and disseminated infection by Coccidioidesposadasii in an alpaca (Vicugna pacos) fetus in Southern California. Med Mycol Case Reports 2: 159-162, 2013

Dubey JP, Calero BR, Rosenthal BM, Speer CA, Fayer R. 2016. Sarcocystosis o f animals andhumans, CRC Press, Boca Raton, Florida, p. 510.

Gidlewsk IT, Cheville NF, Rhyan JC , Miller LD, Gilsdo rf MJ. 2000. Experimental Brucella abortus induced abortion in a llama: pathologic effects. Vet Pathol 37: 77-82.

Goyal SM, Bouljihad M, Haugerud S, Ridpath JF. 2002. Isolation of bovine viral diarrhea virus from an alpaca. J Vet Diagn Ivest 14: 6, 523-525.

James LF. 1971 Lesions in neonatal lambs resulting from maternal ingestion of locoweed. Cornell Vet 61: 667-670.

James LF. 1975. Effect of locoweed (Astragalus lentiginosus) feeding on fetal lamb development. Can J Comp M ed 40: 4, 380-384.

James LF, Shupe JL , Binns W, Keeler RF. 1967. Abortive and teratogenic effects of locoweed on sheep and cattle. Am J Vet Res 28: 1, 379-138.

James LF, Keeler RF, Binns W. 1969. Sequence in the abortive and teratogenic effects of locoweed fed to sheep. Am J Vet Res 30: 377-380.

Laperle KD, Silveria F, Anderson DE, Blomme EA. 1999. Dalmeny disease in an alpaca (Lama pacos): sarcocystosis, eosinophilic myositis and abortion. Journal of Comparative Pathology 121: 3, 287-293.

Llorente P, Leoni L, Martinez VM. 2002. Leptospirosis en camélidos sudamericanos. Estudio de prevalencia serológica en distintas regiones de la Argentina. Arch Med Vet Vol 34: 1, 59-68.

Maisonnave J, Rossi CR. 1982. Amicrotiter test for detecting and titrating non-cytopathogenic bovine viral diarrhea virus. Arch Virol 72: 279-287.

Marin R E, Brihuega B, Romero G. 2007. Seroprevalencia de enfermedades infecciosas en llamas (Lama glama) en la Provincia de Jujuy. IV Congreso Latinoamericano Asoc. Espec. Peq. Rum. y Cam. Sudam., Mendoza, Argentina.

Marin RE et al. 2020. Intoxication by Astragalus garbancillo var. garbancillo in llamas (Lama glama). J Vet Diagn Invest 32: 3, 1-4.

Martinez A, Lauroua C, Borrelli LB, Gardner DR, Robles CA. 2019. Spontaneous outbreak of Astragalus pehuenches (Fabaceae) poisoning in cattle in Argentina. Toxicon 157: 84-86.

McLaughlin BG, Greer SC, Singh S. 1993. Listerial abortion in a llama. J Vet Diagn Invest 5: 105-106.

Micheloud J F et al. 2017. Poisoning by Astragalus garbancillo var. garbancillo in sheep in Northwestern Argentina. Intern Journ Poison Plant Res 4: 1, 72-78.

Moré G et al. 2008. Seroprevalence of Neospora caninum, Toxoplasma gondii and Sarcocystis sp in llamas (Lama glama) from Jujuy, Argentina Veterinary Parasitology 155: 158-160.