Primer aislamiento de Salmonella enterica serovar Soerenga a partir de cerdas gestantes en Argentina

P. Joaquim; M. Herrera; M. Moroni; P. Chacana

doi:10.30972/vet.3517472

Autores/as

P. Joaquim Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria. Centro de Investigación en Ciencias Veterinarias y Agronómicas. UEDD IPVET INTA CONICET, Instituto de Patobiología. https://orcid.org/0000-0001-8961-7565
M. Herrera DILAB, SENASA
M. Moroni Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas (INEI) - ANLIS Dr. Carlos G. Malbrán. Servicio de Enterobacterias
P. Chacana Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria. Centro de Investigación en Ciencias Veterinarias y Agronómicas. UEDD IPVET INTA CONICET, Instituto de Patobiología https://orcid.org/0000-0003-2824-8385

DOI:

https://doi.org/10.30972/vet.3517472

Palabras clave:

Salmonella Soerenga, cerdas gestantes, materia fecal, producción intensiva

Resumen

El primer aislamiento de Salmonella enterica serovariedad Soerenga en Argentina se obtuvo a partir de muestras de materia fecal provenientes de cerdas gestantes de una producción intensiva de la provincia de La Pampa, Argentina, en febrero del 2019. Se realizó la identificación bioquímica y mediante serotipificación. Además, se caracterizó dicho aislamiento en función a la resistencia a 17 antimicrobianos y presencia de 10 genes de virulencia y se realizó el análisis de electroforesis en gel de campo pulsado. El aislamiento resultó resistente a eritromicina, tiamulina y tilosina, y presentó los genes de virulencia sopB, ssaQ, mgtC, avrA y bcfC. Como resultado de la digestión enzimática del ADN cromosomal con la enzima XbaI se obtuvo un perfil de ADN que no coincidió con ningún aislamiento presente en la Base de Datos Nacional del Servicio de Enterobacterias, INEI ANLIS “Dr. Carlos G. Malbrán” (Buenos Aires, Argentina).

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

Bauer AW, Kirby WMM, Sherris JC, Turck M. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. Am. J. Clin. Pathol. 1966; 45, 149-58.

Center for Disease Control and Prevention. Standard Operating Procedure for PulseNet PFGE of Escherichia coli O157:H7, Escherichia coli non-O157 (STEC), Salmonella serotypes, Shigella sonnei and Shigella flexneri. 2018. Available at: https://www.cdc.gov/pulsenet/pathogens/pfge.html

Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing, M100, 32nd ed. Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne, PA. 2022.

Eng SK, Pusparajah P, Ab Mutalib NS, Ser HL, Chan KG, Lee LH. Salmonella: a review on pathogenesis, epidemiology and antibiotic resistance. Front. Life Sci. 2015; 8(3): 284-293.

European Food Safety Authority and European Centre for Disease Prevention and Control. The European Union One Health 2021 Zoonoses Report. EFSA Journal 2022; 20(12): e07666.

Fookes M, Schroeder GN, Langridge GC, Blondel CJ, Mammina C, Connor TR, Seth-Smith H, Vernikos G, Robinson K, Sanders M, Petty N, Kingsley R, Baumler A, Thomson NR. Salmonella bongori provides insights into the evolution of the Salmonellae. PLoS pathogens. 2011; 7(8): e1002191.

Genovese KJ, Jung YS, McReynolds JL, Anderson RC, Nisbet DJ. Antimicrobial resistance and serotype prevalence of Salmonella isolated from dairy cattle in the southwestern United States. Microb. Drug. Resist. 2004; 10(1): 51-56.

Grimont PAD, Weill FX. Antigenic formulae of the Salmonella serovars. Paris, France: WHO Collaborating Centre for Reference and Research on Salmonella, Institut Pasteur. 2007; 9: 1-166.

Huehn S, La Ragione R, Anjum M, Saunders M, Woodward M, Bunge C, Helmuth R, Hauser E, Guerra B, Beutlich J, Bris-abois A, Peters T, Svensson L, Madajczak G, Litrup E, Imre A, Herrera-Leon S, Mevius D, Newell D, Malorny B. Virulotyping andantimicrobial resistance typing of Salmonella enterica serovars relevant to human health in Europe. Foodborne Pathog. Dis. 2010; 7(5): 523-535.

Jajere SM. A review of Salmonella enterica with particular focus on the pathogenicity and virulence factors, host specificity and antimicrobial resistance including multidrug resistance. Vet. World. 2019; 12(4): 504.

Joaquim P, Herrera M, Dupuis A, Chacana P. Virulence genes and antimicrobial susceptibility in Salmonella enterica serotypes isolated from swine production in Argentina. Rev. Arg. Microbiol. 2021; 53(3): 233-239.

Kauffmann F, Bövre K. Two New Salmonella Types: Salmonella loenga= 1, 42: z10: z6 and Salmonella soerenga= 30: i: 1, w. Acta pathol. Microbial. Scand. 1957; 41(2): 159-60.

Malorny B, Hoorfar J, Bunge C, Helmuth R. Multicenter Validation of the Analytical Accuracy of Salmonella PCR: towards an International Standard. Appl. Environ. Microbiol. 2003; 69(1): 290-296.

Molina A, Granados-Chinchilla F, Jiménez M, Acuna-Calvo M T, Alfaro M, Chavarría G. Vigilance for Salmonella in feedstuffs available in Costa Rica: prevalence, serotyping and tetracycline resistance of isolates obtained from 2009 to 2014. Foodborne Pathog. Dis. 2016; 13(3): 119-127.

López Cruz, ME. Aislamiento e identificación de Salmonella spp., de babillas (Caiman crocodilus fuscus) en su hábitat natural (Represa Hidroprado), departamento del Tolima. Universidad del Tolima. 2018; 47 p. Available: https://repository.ut.edu.co/entities/publication/6cc0af9f-8c52-464e-bf18-16e43ab21ff7

OIE. Salmonelosis. Manual de Pruebas de Diagnóstico y las Vacunas para los Animales Terrestres (Manual Terrestre versión online). 2018; Cap. 3.09.08: 1-20.

Pearson MAJ, Galas M, Corso A, Hormazábal JC, Valderrama CD, Marcano NS, Ramon-Pedro P, Melano RG. Consenso latinoamericano para definir, categorizar y notificar patógenos multirresistentes, con resistencia extendida o panresistentes. Rev. Panam. Salud Publica. 2019; 43: e65.

Pulido-Landínez M. Food safety-Salmonella update in broilers. Anim. Feed Sci. Technol. 2019; 250: 53-58.

Rahn K, De Grandis SA, Clarke RC, McEwen SA, Galan JE, Ginocchio C, Gyles CL. Amplification of an invA gene sequence of Salmonella Typhimurium by polymerase chain reaction as a specific method of detection of Salmonella. Mol. Cell. 1992; 6(4): 271-279.

Rincón-Gamboa SM, Poutou-Piñales RA, Carrascal-Camacho AK. Antimicrobial resistance of Non-Typhoid Salmonella in meat and meat products. Foods. 2021; 10(8): 1731.

Somda NS, Bonkoungou IJO, Sambe-Ba B, Drabo MS, Wane AA, Sawadogo-Lingani H, Savadogo A. Diversity and antimicrobial drug resistance of non-typhoid Salmonella serotypes isolated in lettuce, irrigation water and clinical samples in Burkina Faso. J. Agric. Food Res. 2021; 5: 100167.

Tenover FC, Arbeit RD, Goering RV, Mickelsen PA, Murray BE, Persing DH, Swaminathan B. Interpreting Chromosomal DNA Restriction Patterns Produced by PulsedField Gel Electrophoresis: Criteria for Bacterial Strain Typing. J. Clin. Microbiol. 1995; 33(9): 2233-2239.

World Health Organization. WHO list of critically important antimicrobials for human medicine ( WHO CIA list) . World Health Organization. 2019 . Available at: https://apps.who.int/iris/handle/10665/325036.

World Organization for Animal Health. The OIE List of Antimicrobial Agents of Veterinary Importance. 2021. Available at: https://www.woah.org/app/uploads/2021/03/oie-list-antimicrobials.pdf