Policultivo de juveniles de pacú (Piaractus mesopotamicus) y sábalo (Prochilodus lineatus) en un sistema acuapónico
DOI:
https://doi.org/10.30972/vet.3719290Palabras clave:
acuaponía, especies nativas, sistemas de recirculación, producción sustentable, crecimiento de pecesResumen
El sistema acuapónico representa una alternativa productiva sostenible que integra la cría de peces y el cultivo de vegetales en un mismo circuito de agua, optimizando el uso de recursos y reduciendo el impacto ambiental negativo. El presente estudio tuvo como objetivo evaluar el desempeño productivo de un sistema acuapónico en policultivo, integrado por juveniles de pacú (Piaractus mesopotamicus) y sábalo (Prochilodus lineatus), en combinación con el cultivo hidropónico de lechuga (Lactuca sativa), mediante el análisis de los parámetros de crecimiento, supervivencia y calidad del agua. El ensayo se llevó a cabo en cuatro módulos independientes, con una duración de 51 días. Cada módulo estuvo compuesto por un tanque para peces (700 L), un sedimentador de sólidos (clarificador) de 200 L, un filtro biológico de 100 L y canales de cultivo hidropónicos para las plantas (4 m2). Los resultados evidenciaron un adecuado crecimiento del pacú, con una tasa de crecimiento específico (TCE) de 1,61-2,16% día-1; 96,67-98,33% de supervivencia y una biomasa final entre 9,05 y 11,09 kg por módulo. El sábalo, en cambio, presentó un crecimiento limitado (TCE: 0,13-0,34% día-1), una tasa de supervivencia superior al 94% y una biomasa final entre 1,43 y 1,57 kg por módulo. La producción de lechuga alcanzó 5,66-8,52 kg por módulo, con rendimientos superiores en el módulo 2. Los parámetros físico-químicos del agua se mantuvieron dentro de rangos adecuados para ambas especies de peces, aunque se detectaron niveles moderadamente elevados de amonio y nitrito, pero sin efectos negativos sobre la supervivencia. Se concluye que el policultivo acuapónico con pacú y sábalo es viable y sustentable, destacándose el pacú por su adaptabilidad y crecimiento. Se recomienda ajustar la proporción de especies y el régimen alimentario para optimizar el rendimiento del sábalo y evaluar la viabilidad económica del sistema en futuras investigaciones.
Descargas
Citas
1. Abad D, Rincón D, Poleo G. Índices de rendimiento corporal en morocoto Piaractus brachypomus cultivado en sistemas Biofloc. Zootec. Trop. 2014; 32(2): 119-130. Disponible en: https://ve.scielo.org/pdf/zt/v32n2/art03.pdf
2. Amoussou N, Lecocq T, Fourrier C, Nivelle R, Fleck C, Fontaine P, Pasquet A, Thomas M. A multi-trait evaluation framework to assess the consequences of polyculture in fish production: An application for pikeperch in recirculated aquaculture systems. Aquac. Rep. 2022; 27: 101349. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2022.101349 DOI: https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2022.101349
3. Campanati C, Willer D, Schubert J, Aldridge DC. Sustainable intensification of aquaculture through nutrient recycling and circular economies: more fish, less waste, blue growth. Rev. Fish. Sci. Aquac. 2022; 30(2): 143-69. https://doi.org/10.1080/23308249.2021.1897520 DOI: https://doi.org/10.1080/23308249.2021.1897520
4. Davidson J, Good C, Welsh C, Summerfelt ST. Comparing the effects of high vs. low nitrate on the health, performance, and welfare of juvenile rainbow trout Oncorhynchus mykiss within water recirculating aquaculture systems. Aquacult. Eng. 2014; 59: 30-40. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2014.01.003 DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2014.01.003
5. De Silva SS, Anderson TA. Fish nutrition in aquaculture. Springer Science & Business Media; 1994.
6. Della Rosa P, Ortiz JC, Cáceres AD, Sánchez S, Roux JP. Desempeño del sábalo Prochilodus lineatus en policultivo con pacú Piaractus mesopotamicus. Lat. Am. J. Aquat. Res. 2016; 44(2): 336-341. https://doi.org/10.3856/vol44-issue2-fulltext-14 DOI: https://doi.org/10.3856/vol44-issue2-fulltext-14
7. Domínguez Castanedo O, Martínez Espinosa DA. Desempeño de los sistemas acuícolas de recirculación en el cultivo intensivo del pacú Piaractus mesopotamicus (Characiformes: Characidae). Rev. Biol. Trop. 2012; 60(1): 381-391. DOI: https://doi.org/10.15517/rbt.v60i1.2771
8. FAO. El estado mundial de la pesca y la acuicultura. La sostenibilidad en acción. Roma. 2020. https://doi.org/10.4060/ca9229es DOI: https://doi.org/10.4060/ca9229es
9. FAO. El estado mundial de la pesca y la acuicultura 2022: Hacia la transformación azul. Roma. 2022. Disponible en: https://www.fao.org/documents/card/en/c/cc0461es
10. García JJ, Celis LM, Villalba EL, Mendoza LC, Brú SB, Atencio VJ, Pardo SC. Evaluación del policultivo de bocachico (Prochilodus magdalenae) y tilapia (Oreochromis niloticus) utilizando superficies fijadoras de perifiton. Rev. Med. Vet. Zoot. 2011; 58(2): 71-83. Disponible en: http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0120-29522011000200002
11. Goddek S, Joyce A, Kotzen B, Burnell GM. Aquaponics food production systems: combined aquaculture and hydroponic production technologies for the future. Springer Nature. 2019. https://doi.org/10.1007/978-3-030-15943-6 DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-030-15943-6
12. González O, González L, Comolli J, Santinón J, Agüero C, Roux J. Parámetros Productivos de dos especies de peces autóctonos (Piaractus mesopotamicus y Prochilodus lineatus) en un sistema acuapónico con lechuga (Lactuca sativa sp). Agrotecnia. 2021; 31: 43-55. https://doi.org/10.30972/agr.0315815 DOI: https://doi.org/10.30972/agr.0315815
13. He J, Qin L, Chong ELC, Choong TW, Lee SK. Growth responses and root characteristics of lettuce grown in aeroponics, hydroponics and substrate culture. Horticulturae. 2018; 4(4): 35. https://doi.org/10.3390/horticulturae4040035 DOI: https://doi.org/10.3390/horticulturae4040035
14. Heise J, Müller H, Probst AJ, Meckenstock RU. Ammonium removal in aquaponics indicates participation of comammox Nitrospira. Curr. Microbiol. 2021; 78: 894-903. https://doi.org/10.1007/s00284-021-02358-3 DOI: https://doi.org/10.1007/s00284-021-02358-3
15. Ibrahim LA, Shaghaleh H, El-Kassar GM, Abu-Hashim M, Elsadek EA, Alhaj Hamoud Y. Aquaponics: a sustainable path to food sovereignty and enhanced water use efficiency. Water. 2023; 15(24): 4310. https://doi.org/10.3390/w15244310 DOI: https://doi.org/10.3390/w15244310
16. Ip YK, Chew SF, Randall DJ. Ammonia toxicity, tolerance, and excretion. In: Wright PA, Anderson PM, editors. Fish Physiology. Vol. 20. San Diego: Academic Press; 2001. p. 109-148. DOI: https://doi.org/10.1016/S1546-5098(01)20005-3
17. Khan KU, Gous RM, Mansano CF, Nascimento TM, Romaneli RD, Rodrigues AT, Sakomura NK, Fernandes JB. Response of juvenile pacu (Piaractus mesopotamicus Holmberg, 1887) to balanced digestible protein. Aquac. Res. 2020; 51(9): 3729-40. https://doi.org/10.1111/are.14722 DOI: https://doi.org/10.1111/are.14722
18. Kubitza F. pH da água regula excreção e toxidez de amônia. Revista Panorama de Aquicultura. 2017a; 27(160): 14-23.
19. Kubitza F. O impacto da amônia, do nitrito e do nitrato sobre o desempenho e a saúde dos peixes e camarões. Revista Panorama de Aquicultura. 2017b; 27(164): 14-27.
20. Márquez L, Almansa E, Ruiz Díaz NE, Díaz M, Moyano FJ. Relationships between the specific growth rate and the thermal-unit growth coefficient applied to cultured juvenile fish. Front. Mar. Sci. 2024; 11: 1332912. https://doi.org/10.3389/fmars.2024.1332912 DOI: https://doi.org/10.3389/fmars.2024.1332912
21. Mastrochirico-Filho VA, Hata ME, Kuradomi RY, De Freitas MV, Ariede RB, Pinheiro DG, Robledo D, Houston R, Hashimoto DT. Transcriptome profiling of pacu (Piaractus mesopotamicus) challenged with pathogenic Aeromonas hydrophila: inference on immune gene response. Front. Genet. 2020; 11: 604. https://doi.org/10.3389/fgene.2020.00604 DOI: https://doi.org/10.3389/fgene.2020.00604
22. Mello Pinho S, de Mello GL, Fitzsimmons KM, Emerenciano MG. Integrated production of fish (pacu Piaractus mesopotamicus and red tilapia Oreochromis sp.) with two varieties of garnish (scallion and parsley) in aquaponics system. Aquac. Int. 2018; 26(1): 99-112. https://doi.org/10.1007/s10499-017-0198-y DOI: https://doi.org/10.1007/s10499-017-0198-y
23. Meza Arroyo M. Comportamiento de tres técnicas de cultivo hidropónico con lechuga (Lactuca sativa L.) en un sistema acuapónico - Echarati - La Convención - Cusco (Tesis de grado). Universidad Nacional de San Antonio Abad del Cusco. (2018).
24. Monsees H, Klatt L, Kloas W, Wuertz S. Chronic exposure to nitrate significantly reduces growth and affects the health status of juvenile Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.) in recirculating aquaculture systems. Aquac. Res. 2017; 48(7): 3482-92. https://doi.org/10.1111/are.13174 DOI: https://doi.org/10.1111/are.13174
25. Moreno Simón EW, Zafra Trelles A. Sistema acuapónico del crecimiento de lechuga, Lactuca sativa, con efluentes de cultivo de tilapia. REBIOL. 2015 34(2): 60-72. Disponible en: https://revistas.unitru.edu.pe/index.php/facccbiol/article/view/770
26. Naranjo-Robayo N, Castro-González M, Gómez-Ramírez E. Quantification and characterization of nitrifying bacteria isolated from an aquaponic system. Rev. U.D.C.A. Actual. Divulg. Cient. 2025; 28(1): e2653. https://doi.org/10.31910/rudca.v28.n1.2025.2653 DOI: https://doi.org/10.31910/rudca.v28.n1.2025.2653
27. National Research Council. Nutrient requirements of fish and shrimp. Washington (DC): The National Academies Press; 2011. https://doi.org/10.17226/13039 DOI: https://doi.org/10.17226/13039
28. Negri M, Romera DM, Garcia F. Integrated multitrophic aquaculture in ponds using substrate for periphyton as natural source of food. Bol. Inst. Pesca. 2023; 49. DOI: https://doi.org/10.20950/1678-2305/bip.2023.49.e783
29. Nitz LF, Pellegrin L, Maltez LC, Pinto D, Sampaio LA, Monserrat JM, Garcia L. Temperature and hypoxia on oxidative stress responses in pacu Piaractus mesopotamicus. J. Therm. Biol. 2020; 92: 102682. https://doi.org/10.1016/j.jtherbio.2020.102682 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jtherbio.2020.102682
30. Pérez Gómez EA. Producción de Lechuga y Tilapia en Acuaponia. In: Congreso Nacional de Acuaponia. Universidad Autónoma de Chapingo. Mexico 2017.
31. Poleo G, Aranbarrio JV, Mendoza L, Romero O. Cultivo de cachama blanca en altas densidades y en dos sistemas cerrados. Pesqui. Agropecu. Bras. 2011; 46: 429-37. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-204X2011000400013
32. Rakocy J. Aquaponics—integrating fish and plant culture. In J. H. Tidwell (Ed.), Aquaculture production systems. Wiley-Blackwell, Oxford. 2012; pp. 343-386. DOI: https://doi.org/10.1002/9781118250105.ch14
33. Santinón JJ, Hernandez DR, Ruiz Diaz FJ, Comolli JA, Sánchez S, Roux JP, González AO. Recría de juveniles de Piaractus mesopotamicus (Pacú) en sistema acuapónico. Agrotecnia. 2023; 34: 24-33. https://doi.org/10.30972/agr.347269 DOI: https://doi.org/10.30972/agr.347269
34. Somerville C, Cohen M, Pantanella E, Stankus A, Lovatelli A. Producción de alimentos en acuaponía a pequeña escala – Cultivo integral de peces y plantas (FAO Documento Técnico de Pesca y Acuicultura No. 589). FAO, Roma. 2022. Disponible en: https://doi.org/10.4060/i4021es DOI: https://doi.org/10.4060/i4021es
35. Sverlij SB, Espinach Ros A, Orti G. Sinopsis de los datos biológicos y pesqueros del sábalo (Prochilodus lineatus). FAO Fisheries Synopsis No. 154. Rome: FAO; 1993.
36. Thakur K. An alternative approach towards nitrification and bioremediation of wastewater from aquaponics using biofilm-based bioreactors: A review. Sci. Total Environ. 2023; 888: 164022. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2023.137849 DOI: https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2023.137849
37. Thomas M, Pasquet A, Aubin J, Nahon S, Lecocq T. When more is more: taking advantage of species diversity to move towards sustainable aquaculture. Biol. Rev. 2021; 96(2): 767-84. https://doi.org/10.1111/brv.12677 DOI: https://doi.org/10.1111/brv.12677
38. Timmons MB, Ebeling JM. Recirculating Aquaculture (3.ª ed.). Ithaca Publishing Company. 2013.
39. UNESCO. Informe Mundial sobre el Desarrollo de los Recursos Hídricos 2023: Alianzas y cooperación por el agua. 2023. Disponible en: https://www.unesco.org/reports/wwdr/2023/es/home
40. Valladão GMR, Gallani SU, Pilarski F. South American fish for continental aquaculture. Rev. Aquacult. 2016; 10: 351-369. https://doi.org/10.1111/raq.12164 DOI: https://doi.org/10.1111/raq.12164
41. Wang YJ, Yang T, Kim HJ. pH dynamics in aquaponic systems: Implications for plant and fish crop productivity and yield. Sustainability. 2023; 15(9): 7137. https://doi.org/10.3390/su15097137 DOI: https://doi.org/10.3390/su15097137
42. Zuffo TI, Durigon EG, Morselli MB, Picoli F, Folmann S, Kinas JF, Savaris T, Zampar A, Lopes DL. Lethal temperature and toxicity of ammonia in juveniles of Curimbatá (Prochilodus lineatus). Aquaculture. 2021; 545: 737138. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.737138 DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.737138
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2026 J.J. Santinón, D.R. Hernández, F.J. Ruiz Díaz , J.A. Comolli, D.M Cerdán, A.O. González

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.
Política de acceso abierto
Esta revista proporciona un acceso abierto inmediato a su contenido, basado en el principio de que ofrecer al público un acceso libre a las investigaciones ayuda a un mayor intercambio global de conocimiento. La publicación por parte de terceros será autorizada por Revista Veterinaria toda vez que se la reconozca debidamente y en forma explícita como lugar de publicación del original.
Esta obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento-NoComercial 4.0 Internacional (CC BY-NC 4.0)





.jpg)
.jpg)