Caracterización de prácticas de desparasitación contra parásitos gastrointestinales en caninos de centros veterinarios de Santa Anita, Lima, Perú

Antonio Bacilio; Carlos Alberto Chuquizuta Ramos

doi:10.30972/vet.3719052

Autores/as

Antonio Bacilio Carrera de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Científica del Sur, Lima, Perú. https://orcid.org/0000-0002-0737-2777
Carlos Alberto Chuquizuta Ramos Carrera de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Científica del Sur, Lima, Perú. https://orcid.org/0000-0002-3484-2324

DOI:

https://doi.org/10.30972/vet.3719052

Palabras clave:

caninos domésticos, parásitos gastrointestinales, protocolos de desparasitación, resistencia parasitaria, zoonosis

Resumen

La desparasitación interna es fundamental para la salud animal y la prevención de enfermedades zoonóticas, siendo los médicos veterinarios (MV) los responsables de su correcta implementación. El presente estudio tuvo como objetivo describir las prácticas de desparasitación en caninos adoptadas por MV del distrito de Santa Anita, Lima. Se aplicó una encuesta a 36 MV colegiados y habilitados que laboran en centros veterinarios del distrito, entre octubre y diciembre de 2023. La mayoría de MV recomienda la primera desparasitación en cachorros a las 4 semanas de edad, siguiendo un protocolo a las 4, 8 y 12 semanas. En caninos adultos, el 41,67% sugiere desparasitar cada 2 meses y el 38,89% cada 3 meses. Los criterios más utilizados para realizar la desparasitación fueron la experiencia profesional (91,67%) y la dosis indicada en el prospecto del producto (77,78%). Solo el 5,56% manifestó realizar siempre exámenes coproparasitológicos y apenas el 19,44% consideró todos los factores relevantes del canino antes de desparasitar. Los principios activos más usados en cachorros fueron pamoato de pirantel/praziquantel (16,67%) y oxibendazol/praziquantel (16,67%); mientras que en adultos predominó el uso de fenbendazol/pamoato de pirantel/praziquantel (19,44%) y febantel/pamoato de pirantel/praziquantel (16,67%). Se concluye que los protocolos empleados por los MV presentan una considerable variabilidad, lo cual evidencia la necesidad de mejorar la comunicación sobre prácticas antiparasitarias correctas y fomentar la educación continua y actualizada al personal veterinario.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

1. Aguilar E. Expert judgment. J. Microbiol. Health Educ. 2023; 5(3): 556-570. Disponible en: https://journalmhe.org/ojs3/index.php/jmhe/article/view/84/131

2. Allerton F. editor. BSAVA Small Animal Formulary, Part A: Canine and Feline. 10th ed. British Small Animal Veterinary Association; 2020. Biomedicine & Pharmacotherapy. 124: 109841. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.biopha.2020.109841

3. Alva R, Jara C. Socioepidemiología de las helmintiasis intestinales en perros de casa (Canis familiaris) y los riesgos en la comunidad. Chiclayo-Perú. 2015-2018. REBIOL. 2018; 37(2): 53-62.

4. Alvarado Quito K, Campodónico Durango G. Análisis de las Fintech y su contribución al desarrollo de las PYMES en Guayaquil - Ecuador. Rev. Univ. Soc. 2023;15(2):475-483.

5. Choton Linares A. Determinación de la presencia de huevos de Ancylostoma spp. en suelo y césped según el estado de conservación de parques no cercados en el distrito de Independencia, Lima [Tesis de grado, Universidad Científica del Sur]. 2022. Repositorio institucional de la Universidad Científica del Sur. Disponible en: https://repositorio.cientifica.edu.pe/handle/20.500.12805/2777

6. Companion Animal Parasite Council [CAPC]. CAPC Guidelines. 2022. Disponible en: https://capcvet.org/guidelines/dipylidium-caninum/

7. Consejo Tropical para el Control de los Parásitos en los Animales de Compañía [TroCCAP]. Directrices para el diagnóstico, tratamiento y control de endoparásitos caninos en los trópicos. 2019. Disponible en: http://www.troccap.com/2017press/wpcontent/uploads/2018/05/TroCCAP-Canine-Endo-Guidelines-Spanish.pdf

8. Corral Y. Validez y confiabilidad de los instrumentos de investigación para la recolección de datos. Rev. Cienc. Educ. 2009; 19(33): 228-247.

9. Dantas Torres F, Ketzis J, Mihalca AD, Baneth G, Otranto D, Tort GP, Watanabe M, Linh BK, Inpankaew T, Castro PDJ, Borrás P, Arumugam S, Penzhorn BL, Ybañez AP, Irwin P, Traub RJ. TroCCAP recommendations for the diagnosis, prevention and treatment of parasitic infections in dogs and cats in the tropics. Vet. Parasitol. 2020; 283: 109167.

10. European Scientific Counsel Companion Animal Parasites [ESCCAP]. Guía ESCCAP N°6: Control de protozoos intestinales en perros. 2021. Disponible en: https://www.esccap.org/uploads/docs/3sbvfy71_ESCCAP_Guide_6_spanish_version_def.pdf

11. Fernández D, de Oliveira J, Calderón S, Romero J. Prácticas de diagnóstico y control de parásitos de caninos y felinos en 50 clínicas veterinarias del área metropolitana de Costa Rica. Cienc. Vet. 2008; 26(2): 51-71.

12. Giráldez L, Silva Y, Flores-Rojas JL, Trasmonte G. Diagnosis of the extreme climate events of temperature and precipitation in Metropolitan Lima during 1965–2013. Climate. 2022; 10(8): 112.

13. Imacaña M. Determinación de la efectividad de un antihelmíntico (Prazicuantel + Pamoato Pirantel) en parásitos gastrointestinales de caninos mediante la prueba de reducción de recuento de huevos fecales. Tesis de Grado, Universidad Politécnica Salesiana, Quito, Ecuador. 2022.

14. Jimenez P, Venkatesan A, Redman E, Chen R, Malatesta A, Huff H, Zuluaga D, Avramenko R, Gilleard J, Kaplan R. Multiple drug resistance in hookworms infecting greyhound dogs in the USA. Int. J. Parasitol. Drugs Drug Resist. 2021; 17: 107-117.

15. Loftus J, Acevedo A, Bowman D, Liotta J, Wu T, Zhu M. Elimination of probable praziquantel-resistant Dipylidium caninum with nitroscanate in a mixed-breed dog: a case report. Parasites Vectors. 2022; 15(1): 438.

16. McKean E, Grill E, Choi YJ, Mitreva M, O’Halloran D, Hawdon J. Altered larval activation response associated with multidrug resistance in the canine hookworm Ancylostoma caninum. Parasitology. 2024; 151(3): 271-81.

17. Miranda E. Alta frecuencia de serología positiva contra Toxocara en un hospital pediátrico del Perú. An. Fac. Med. 2014; 75(3): 223-226.

18. Ochoa Y, Falcón N, Zuazo J, Guevara B. Estimación de la población de perros callejeros en el distrito de Los Olivos, Lima, Perú. Rev. Investig. Vet. Perú. 2014; 25(3): 366-373.

19. Oduori DO, Kitala PM, Wachira TM, Mulinge E, Zeyhle E, Gabriël S, Gathura PB. Sympatric occurrence of Taenia saginata and Sarcocystis spp. in cattle from Narok County, Kenya: meat inspection findings with molecular validation. J. Helminthol. 2024; 98: e20.

20. Oehm A, Reiter A, Binz A, Schnyder M. First report of apparent praziquantel resistance in Dipylidium caninum in Europe. Parasitology. 2024; 151(5): 523-528.

21. Pantuzza CR, Diniz AN, Ribeiro MG, de Paula CL, Costa ÉA, Sonne L, Pereira ST, Lopes CE, Rennó MC, Silva RO. Enteric organisms detected in feces of dogs with bloody diarrhea: 45 cases. Top Companion Animal Medicine. 2021; 45: 100549.

22. Rossi L, Lumbreras AEV, Vagni S, Dell’Anno M, Bontempo V. Nutritional and functional properties of colostrum in puppies and kittens. Anim. 2021; 11(11): 3260.

23. Salman M, Abbas R, Mehmood K, Hussain R, Shah S, Faheem M, Zaheer T, Abbas A, Morales B, Aneva I, Martínez J. Assessment of avermectins-induced toxicity in animals. Pharmaceuticals. 2022; 15(3): 332.

24. Santos Cifuentes MF. Análisis de la prescripción y uso de antiparasitarios en centros MV del sur de la ciudad de Guayaquil [Tesis de grado, Universidad Agraria del Ecuador]. Repositorio institucional de la Universidad Agraria del Ecuador. 2024. Disponible en: https://cia.uagraria.edu.ec/Archivos/SANTOS%20CIFUENTES%20MICHAEL%20FRANCISCO.pdf

25. Schwartz R, Bidaisee S, Fields P, Macpherson M, Macpherson C. The epidemiology and control of Toxocara canis in puppies. Parasite Epidemiol. Control. 2021; 16: e00232.

26. Shemyakova S, Shabunin S, Engashev S, Lykhina V, Vatnikov Y, Kulikov E, Orlova A, Ibragimova A, Lobaeva T, Strizhakov A, Semenova V, Bolshakova M. Comparative characteristics of treatment methods in dogs isosporosis and giardiasis. Syst. Rev. Pharm. 2020; 11(6): 568-579.

27. Stull J, Carr A, Chomel B, Berghaus R, Hird D. Small animal deworming protocols, client education, and veterinarian perception of zoonotic parasites in western Canada. Can. Vet. J. 2007; 48(3): 269-276.

28. Universidad de Lima. Reporte trimestral socioeconómico y de bienestar, febrero 2024. 2024. Disponible en: https://www.ulima.edu.pe/sites/default/files/page/file/reporte_trimestral-socioeconomico-y-de-bienestar_feb_2024.pdf

29. Urian C, Gómez R. Uso de antiparasitarios gastrointestinales en clínicas veterinarias de pequeños animales en Tunja, Colombia. Cult. Cient. 2019; 17(17): 66-79.

30. Vale TLD, Sousa IC, Tavares CP, Silva NC, Luz HR, Gomes MN, Sargison N, Costa-Junior LM. Practices employed by veterinary practitioners for controlling canine gastrointestinal helminths and ectoparasites. Rev. Bras. Parasitol. Vet. 2021; 30(4): e007021.

31. Vásquez CL. Protocolos de desparasitación de mascotas y percepción de propietarios frente al riesgo zoonótico en la ciudad de Bogotá [Tesis de maestría, Universidad de La Salle]. Repositorio institucional de la Universidad de La Salle. 2019. Disponible en: https://ciencia.lasalle.edu.co/items/ffa7058b-6ae3-4dc8-ac06-f221fc1d43c5

32. Vega S, Serrano E, Grandez R, Marco Quispe M. Parásitos gastrointestinales en cachorros caninos provenientes de la venta comercial en el Cercado de Lima. Salud Tecnol. Vet. 2014; 2(2): 71-77.

33. Wiebe VJ. Drug therapy for infectious diseases of the dog and cat. 1st ed. Hoboken (NJ): John Wiley & Sons; 2015. Disponible en: https://doi.org/10.1002/9781118911167