Nódulos presentes en leguminosas asociadas a pasturas de Brachiaria sp en la Amazonia Colombiana

J. C. Blanco; A. Y. Páramo; M. A. Montilla

doi:10.30972/vet.3215642

Autores

J. C. Blanco Universidad de la Amazonia. Grupo de Investigación GIPSA.
A. Y. Páramo Universidad de la Amazonia. Grupo de Investigación GIPSA.
M. A. Montilla Universidad de la Amazonia. Semillero de Investigación SIEPSA.

DOI:

https://doi.org/10.30972/vet.3215642

Palavras-chave:

leguminosas, nodulación, pasturas, Brachiaria sp

Resumo

Se estudiaron 23 pasturas de Brachiaria sp dedicadas a la producción bovina doble propósito, para identificar especies de leguminosas presentes y obtener muestras de raíces para extracción y recuento de nódulos. Toda el área correspondió a un total de 149,14 ha, donde solo 84,26 ha contaban con la presencia de leguminosas Desmodium sp, Pueraria phaseoloides, Galactia striata, Arachis pintoi, Stylosanthes sp, Mimosa púdica y Centrosema sp, cuya cobertura fue del 2,89% de dicha área. La especie con mayor porcentaje de cobertura promedio fue A.pintoi con 5,36% seguida de Stylosanthes sp con 5%, G.striata con 3,89% y P.phaseoloides con 2,62%. Las restantes se encontraron en un rango inferior a 2% del área de pastura. Se halló en el estudio un mínimo de 7 nódulos en raíces de Centrosema sp y G.striata, así como un número máximo de 194 nódulos en Desmodium sp. Las cantidades superiores a 100 nódulos por planta solo correspondieron a Desmodium sp, el cual reveló una inoculación satisfactoria que se asoció con su potencial de fijación de nitrógeno mediada por simbiosis. La especie con menor número de nódulos fue M. púdica, hallada en el 4,3% de las pasturas evaluadas, siendo la única de las leguminosas muestreadas que no es consumida directamente por los bovinos y se desarrolla como especie no deseada, indicadora de estados de degradación de pasturas.

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Referências

Acosta C. 2005. Los árboles fijadores de nitrógeno y sus mecanismos biológicos, p. 9: 23-27.

Alexander M. 1994. Introducción a la microbiología del suelo, 2da. ed., E.García Libros y Editoriales S.A., Mexico, D.F.

Arcila N. et al. 2000. Construcción de un territorio amazónico en el siglo XX. Edit. Tercer Mundo, Bogotá, D.C.

Avella DJ. 2007.Caracterización molecular de cepas nativas colombianas de Azotobacter sp mediante el análisis de restricción del DNA ribosomal 16s. Pontificia Universidad Javeriana.

B.Guasch V. 2011. Selección y caracterización de mutantes de Rhizobium tropici CIAT899 afectados en la producción de factores nod en condiciones de estrés salino. Universidad de Sevilla.

Bécquer CJ, Prévost, D. 2014. Revista Cubana de Ciencia Agrícola, 480 p, 301-307.

Bosman H et al. 1990. Composición botánica y nodulación de leguminosas en las pasturas nativas de la planicie costera del Golfo de México. Pasturas Tropicales 12: 1, p 2-8.

Carvalho LR et al. 2019. Nodulation and biological nitrogen fixation (BNF) in forage peanut (Arachis pintoi) cv. Belmonte, subjected to grazing regimes. Agriculture, Ecosystems & Environment, Elsevier, p. 96-106.

Castrillo RF. 2005. El muestreo de suelos, Edit. Ministerio de Agricultura y Ganadería, Costa Rica, Imprenta Nacional.

Farías RR, Sánchez MJ. 2005. Inoculación de leguminosas con Rhizobium. Edit. Mexico.

Franco LH, Calero QD, Durán CV. 2006. Manejo y utilización de forrajes tropicales multipropósito, 1ra. Ed., Centro Internacional de Agricultura Tropical, CIAT Edit. Univ. Nac.de Colombia, doi: 10.5216/ree.v16i1.20132.

Galindo MA. 2000.Síntesis de glutatión y homoglutatión en nódulos de leguminosas. Estación Experim.Aula Dei, Consejo Superior de Investigaciones Científicas.

Garg N, Renseigné N. 2009. Symbiotic nitrogen fixation in legume nodules: process and signaling: A review. Sustainable Agriculture, p. 519–531.

Gates CT. 1974. Nodule and plant development in Stylosanthes humilis HBK: symbiotic response to phosphorus and sulphur, Australian Journal of Botany, 22: 45-55.

Hernández JL, Cubillos JG, Milian PE. 2012. Aislamiento de cepas de Rhizobium sp asociados a dos leguminosas forrajeras en el Centro Biotecnológico del Caribe, Rev Colomb de Microbiol Trop 2: 2, 1-13.

Lopes ES et al. 1974. Seleção de estirpes de Rhizobium sp

para amendoim (Arachis hypogaea L.) e galáxia (Galactia striata). Bragantia, 33: 104-110.

Madigan M, Martinko J, Parker J. 2003. Brock Biologia de los Microorganismos, 10º Ed., Edit. P. Educacion, USA.

McMeniman N. 1997. Methods of estimating intake of

grazing animals. Juiz de Fora, 34.

Mendoza R, Espinoza A. 2017. Guía técnica para muestreo de suelos, Nicaragua.

Pommeresche R, Hansen S. 2017. Examining root nodule activity on legumes, Fertil Crop Technical Note. Available at: http://orgprints.org/31344/1/tn-wp5.pdf.

Prévost D, Antoun H. 2008. Root nodule bacteria and symbiotic nitrogen fixation (Chapter 31). In: Carter MR (ed.): Muestreo de suelo y métodos de análisis, 2da edición, Canadian Society of Soil Science, pp. 379.397.

Recinos CD, García GF. 2007.Aislamiento, evaluación y selección de cepas simbioticas nativas de Rhizobium sp en Phaseolus vulgaris de suelos agrícolas de El Salvador. Tesis, Universidad de El Salvador.

Silva K et al. 2017.Isolamento e diversidades de bactérias fixadoras de nitrógeno obtidas de diferentes espécies de estilosantes no cerrado de roraima. Documentos Boa Vista: 62.

Somasegaran P, Hoben HJ. 1985. Handbook for Rhizobia, Springer, New York, doi: 10.1007/978-1-4613-8375-8.

Thomas RJ. 1992. The role of the legume in the nitrogen cycle of productive and sustainable pastures. Grass & Forage Science 47: 2, 133-142.

Universidad Nacional de Córdoba. 2015. Guía de actividades prácticas de micro- biología agrícola, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Córdoba, Colombia.

Vergueiro DC. 2009. Nodulação de Mimosa pudica l por beta-rizóbio isolados de diferentes ecossistemas no Brasil. Universidade Federal Rural, Rio de Janeiro.

Wang S. et al. 2018. Nitrogen fixation reaction derived from nanostructured catalytic materials, advanced functional materials. Wiley-VCH Verlag 28: 50, p. 1-26.

Wei X, Reich PB, Hobbie SE. 2019. Legumes regulate grassland soil N cycling and its response to variation in species diversity and N supply but not CO2’. Global Change Biology, Blackwell Publishing Ltd, doi: 10.1111/gcb.14636.

Xu R et al. 2019. Global ammonia emissions from synthetic nitrogen fertilizer applications in agricultural systems: Empirical and process-based estimates and uncertainty, Global Change Biology 25: 1, 314-326.

Xu Z, Zhou GS. 2006. Nitrogen metabolism and photosynthesis in Leymus chinensis in response to long-term soil drought. Journal Plant Growth Regul 25: 252-266.

Zhao J. et al. 2014. Legume-soil interactions: legume addition enhances the complexity of the soil food web. Plant Soil 385: 273-286.